نجاح أول تفريخ هرموني مستحث لأسماك القاروص الأوروبي (Dicentrarchus labrax) في القطاع الخاص للاستزراع المائي بليبيا

عبد الله م. المقاوشي; سارة أ. المبروك; محمد ف. سعد الله; محمد ع. عريبي

doi:10.59743/jmset.v11i2.191

المؤلفون

عبد الله م. المقاوشي مركز بحوث الأحياء البحرية، تاجوراء، ليبيا
سارة أ. المبروك المعهد العالي للعلوم والتقنية، شحات، ليبيا
محمد ف. سعد الله مركز بحوث الأحياء البحرية، تاجوراء، ليبيا
محمد ع. عريبي شركة سيف البحر للزراعة المائية، زوارة، ليبيا

DOI:

https://doi.org/10.59743/jmset.v11i2.191

الكلمات المفتاحية:

Dicentrarchus labrax، التحفيز الهرموني، التفريخ الصناعي، سمكة القاروص، نظير الهرمون المطلق لمواجهة الغدد التناسلية

الملخص

تتناول هذه الدراسة توثيق أول تجربة ناجحة للتفريخ الهرموني المستحث لأسماك القاروص الأوروبي (Dicentrarchus labrax) في مفرخ تجاري خاص بليبيا. جُمعت الأمهات والفحول (12 أنثى و9 ذكور) من البيئة الطبيعية ببحيرة فروة، وتم إخضاعها لبرنامج تكييف استمر ثلاثة أشهر تحت ظروف ضوئية متدرجة (12 ساعة إضاءة: 12 ساعة ظلام، ثم 9 ساعات إضاءة: 15 ساعة ظلام)، مع خفض تدريجي لدرجة الحرارة من 21°م إلى 14°م، بما يعادل نحو 1638 وحدة حرارية يومية. أُعطيت الإناث حقنة عضلية واحدة من نظير الهرمون المطلق لمواجهة الغدد التناسلية Lh-RHa بجرعة (10 ميكروجم. كجم⁻¹)، ما أدى إلى حدوث الإباضة في جميع الإناث خلال 72 ساعة. بلغ متوسط إنتاج البيض 16.3% من وزن الأنثى، بكمية إجمالية بلغت 4000 جرام، فيما تراوح متوسط القطر 1000 ميكرومتر، مطابقًا لمعايير الجودة المعتمدة. ورغم انحياز نسبة الجنس لصالح الإناث (1.3 أنثى: 1 ذكر)، وصلت نسبة الفقس إلى 50%، متجاوزة النسب المعتادة للبيض المستورد بعد النقل (≈ 30%). وأظهر التحليل الاقتصادي أن التكلفة انخفضت بنسبة 61%، إذ بلغت 0.10 يورو لكل يرقة يتم تفريخها محلياً مقارنة بـ 0.26 يورو للزريعة للمستوردة. تشير النتائج إلى أن تطبيق بروتوكولات محلية باستخدام أمهات جمعت من البحر، يمكن أن يوفر زريعة قاروص عالية الجودة بشكل مستدام، ويُعتبر نموذجًا عمليًا قابلاً للتكرار في مفرخات الأسماك بليبيا، مما يساهم في تقليل الاعتماد على الزريعة المستوردة.

التنزيلات

تنزيل البيانات ليس متاحًا بعد.

المراجع

Bolla, S., & Holmefjord, I. (1988). Effect of temperature and light on development of Atlantic halibut larvae. Aquaculture, 74(3-4), 355-358.

Bondad-Reantaso, M. G., Arthur, J. R., & Subasinghe, R. P. (Eds.). (2008). Understanding and applying risk analysis in aquaculture. Rome, Italy: Food and Agriculture Organization of the United Nations.

Bromage, N. R., & Roberts, R. J. (Eds.). (1995). Broodstock management and egg and larval quality. Blackwell Science.

Carrillo, M., Bromage, N., Zanuy, S., Serrano, R., & Prat, F. (1989). The effect of modifications in photoperiod on spawning time, ovarian development and egg quality in the sea bass (Dicentrarchus labrax L.). Aquaculture, 81(3-4), 351-365.

Costa-Pierce, B. A. (Ed.). (2022). Ecological aquaculture: the evolution of the blue revolution, 2nd ed.. John Wiley & Sons.

El-Sayed, A. F. M., Nasr-Allah, A. M., Dickson, M., & Gilmour, C. (2022). Analysis of aquafeed sector competitiveness in Egypt. Aquaculture, 547, 737486.

FAO (2023). Cultured aquatic species information programme: Dicentrarchus labrax (European seabass). FAO Fisheries and Aquaculture Division. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Available online at: [https://www.fao.org/fishery/en/culturedspecies/dicentrarchus_labrax].

Fernández-Palacios, H., Izquierdo, M. S., Robaina, L., Valencia, A., Salhi, M., & Vergara, J. (1995). Effect of n− 3 HUFA level in broodstock diets on egg quality of gilthead sea bream (Sparus aurata L.). Aquaculture, 132(3-4), 325-337.

Izquierdo, M. S., Fernandez-Palacios, H., & Tacon, A. G. J. (2001). Effect of broodstock nutrition on reproductive performance of fish. Aquaculture, 197(1-4), 25-42.

Louro, B., Power, D. M., & Canario, A. V. (2014). Advances in European sea bass genomics and future perspectives. Marine genomics, 18, 71-75.

Lubzens, E., Young, G., Bobe, J., & Cerdà, J. (2010). Oogenesis in teleosts: how fish eggs are formed. General and comparative endocrinology, 165(3), 367-389.

Mañanós, E., Duncan, N., & Mylonas, C. C. (2008). Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture: Marine and Freshwater Species, Cabrita, E., Robles, V., & Herraez, M. P. (Eds.). CRC Press.

Moretti, M., Pedini Fernandez-Criado, M., Cittolin, G., & Guidastri, R. (1999). Manual on hatchery production of seabass and gilthead seabream, Vol. 1. FAO Fisheries Technical Paper No. 380/1. Food and Agriculture Organization of the United Nations.

Mylonas, C. C., & Zohar, Y. (2000). Use of GnRHa-delivery systems for the control of reproduction in fish. Reviews in fish biology and fisheries, 10(4), 463-491.

Mylonas, C. C., & Zohar, Y. (2007). Promoting oocyte maturation, ovulation and spawning in farmed fish. In The fish oocyte: from basic studies to biotechnological applications, 437-474. Dordrecht: Springer Netherlands.

Mylonas, C. C., Fostier, A., & Zanuy, S. (2010). Broodstock management and hormonal manipulations of fish reproduction. General and comparative endocrinology, 165(3), 516-534.

Mylonas, C. C., Sigelaki, I., Divanach, P., Mananõs, E., Carrillo, M., & Afonso-Polyviou, A. (2003). Multiple spawning and egg quality of individual European sea bass (Dicentrarchus labrax) females after repeated injections of GnRHa. Aquaculture, 221(1-4), 605-620.

Paladini, G., Longshaw, M., Gustinelli, A., & Shinn, A. P. (2017). Parasitic diseases in aquaculture: their biology, diagnosis and control. Diagnosis and control of diseases of fish and shellfish, 37-107.

Papadaki, M., Kaitetzidou, E., Papadakis, I. E., Sfakianakis, D. G., Papandroulakis, N., Mylonas, C. C., & Sarropoulou, E. (2022). Temperature-biased miRNA expression patterns during European sea bass (Dicentrarchus labrax) development. International Journal of Molecular Sciences, 23(19), 11164.

Paruğ, Ş., Jabbr, A., & Lazrag, F. A. (2024). Sustainable development of fisheries and aquaculture in North Africa: Current status and future prospects. Memba Kastamonu Üniversitesi Su Ürünleri Fakültesi Dergisi, 10(1), 90-105.

Pavlidis, M. A., & Mylonas, C. C. (Eds.). (2011). Sparidae: Biology and aquaculture of gilthead sea bream and other species. John Wiley & Sons.

Reading, B. J., Andersen, L. K., Ryu, Y. W., Mushirobira, Y., Todo, T., & Hiramatsu, N. (2018). Oogenesis and egg quality in finfish: yolk formation and other factors influencing female fertility. Fishes, 3(4), 45.

Sánchez, E. L. M., Duncan, N., Reiriz, C. S., López, A. G., Guzmán, J. M., & Cueto, J. A. M. (2019). Reproductive Physiology and Broodstock Management of Soles. In The Biology of Sole, 90-141. CRC Press.

Sørensen, S. R., Butts, I. A. E., Munk, P., & Tomkiewicz, J. (2016). Effects of salinity and sea salt type on egg activation, fertilization, buoyancy and early embryology of European eel, Anguilla anguilla. Zygote, 24(1), 121-138.

Sorgeloos, P., Coutteau, P., Dhert, P., Merchie, G., & Lavens, P. (1998). Use of Brine Shrimp, Artemia spp., in Larval Crustacean Nutrition: A Review. Reviews in Fisheries Science, 6(1-2), 55-68.

Sorgeloos, P., Lavens, P., Léger, P., Tackaert, W., & Versichele, D. (1993). The use of Artemia in marine fish larviculture. In: Finfish Hatchery in Asia '91, 73-86.

Suresh, A. V., Rudacille, J. B., Allyn, M. L., Sheehan, V., Sheehan, R. J., & Kohler, C. C. (2000). Single injections of human chorionic gonadotropin or mammalian gonadotropin releasing hormone analog at low dosages induce ovulation in white bass. North American Journal of Aquaculture, 62(2), 87-94.

Valdebenito, I. I., Gallegos, P. C., & Effer, B. R. (2015). Gamete quality in fish: evaluation parameters and determining factors. Zygote, 23(2), 177-197.

Vandeputte, M., Gagnaire, P. A., & Allal, F. (2019). The European Sea bass: a key marine fish model in the wild and in aquaculture. Animal genetics, 50(3), 195-206.

Villamizar, N., Blanco-Vives, B., Migaud, H., Davie, A., Carboni, S., & Sanchez-Vazquez, F. J. (2011). Effects of light during early larval development of some aquacultured teleosts: A review. Aquaculture, 315(1-2), 86-94.

Zanuy, S., Carrillo, M., & Ruiz, F. (1986). Delayed gametogenesis and spawning of sea bass (Dicentrarchus labrax L.) kept under different photoperiod and temperature regimes. Fish Physiology and Biochemistry, 2(1), 53-63.

Zanuy, S., Prat, F., Carrillo, M., & Bromage, N. R. (1995). Effects of constant photoperiod on spawning and plasma 17β-oestradiol levels of sea bass (Dicentrarchus labrax). Aquatic Living Resources, 8(2), 147-152.

Zohar, Y., & Mylonas, C. C. (2001). Endocrine manipulations of spawning in cultured fish: from hormones to genes. In: Reproductive biotechnology in Finfish aquaculture, 99-136. Elsevier.